考马斯亮蓝(Bradford)法蛋白浓度测定试剂盒
考马斯亮蓝(Bradford)法蛋白浓度测定试剂盒 M2031 产品说明书
7. 根据测得的吸收值，在标准曲线上即可查得样品的蛋白含量。
8. 计算蛋白浓度：以查得的蛋白含量除以样品体积50μl，再乘以相应的稀释倍数即可得到
待测样品的实际浓度。
二、微量测定：
只需要将常规测定第2步中的蛋白标准品加去离子水稀释至50ug/ml（此方案工作线性范
围为5-50ug/ml。）,其它步骤和常规测定相同。 您也可以根据需要调整蛋白标准品的浓度和各管中蛋白标准品的添加量，以便得到更精
确的结果。
常见问题：
1. 当吸光度大于0.8A时，请把样本稀释后再测定。
2. Bradford法测定蛋白浓度时待测样品浓度在 1～1500 微克/毫升浓度范围内有较好的线性
关系。您也可以根据需要调整标准蛋白稀释浓度范围来绘制标准曲线，以便得到更精确的结果。 3. 最好使用塑料或玻璃比色皿。如使用石英比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇荡洗，以洗
去染色用完后可以乙醇反复清洗。塑料比色皿决不可用乙醇或丙酮长时间浸泡。 4. 比色顺序从蛋白浓度低的管开始，中间不必清洗比色皿，以免影响结果。 5. 疏水蛋白或粘蛋白，可能与染料发生沉淀，加入等体积1N NaOH 可以消除。 6. 如果知道样品的蛋白大体浓度，可以采用相近的3管做标准曲线。
7. 由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford法用于不同蛋白质
测定时有较大的偏差。 8. Bradford 染色液含有刺激性或者腐蚀性化合物，操作时要戴乳胶手套，避免沾染皮肤，眼
睛和衣服。 若沾染皮肤、眼睛时，要用大量清水或者生理盐水冲洗。 9. Bradford 染色液中考马斯亮蓝易聚集成团，每次使用前请颠倒6～8 次并且竖直抓住瓶口做
水平圈动作，旋转瓶中液体，帮助充分混匀，但不可以上下振荡混匀。 10. 低温会降低 Bradford 染色液的敏感度，因此每次使用前应该使Bradford 染色液回复到室
温，可以倒出每次需要的 Bradford 染色液，将原瓶放回冰箱，仅仅将需要的Bradford 染色液复温，可以减少复温时间。 上海美季生物技术有限公司
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本产品仅供科学研究使用
This product is for research use only. Not for human or diagnostic use.