可以。DNA的碱基在260nm处有吸收。用紫外分光光度计测260nm处DNA分子的OD值，就能通过朗伯-比尔定律OD=εlc换算出浓度。式子里l是吸收光路的长度；c是浓度，单位一般用μg/ml；ε是吸光系数，双链DNA一般取0.02ml/(μg·cm)，单链DNA因为增色效应，ε要大一些，取0.05ml/(μg·cm)。 如果知道一个DNA片段的碱基数，还可以换算出DNA片段的物质的量浓度。 取1μDNA，用ddH2O水稀释到1ml，以1ml ddH2O为对照，紫外分光光度计测定OD260，OD280，OD260/OD280(都在 1.8左右之间，说明 DNA样品纯度较高),concentration。
另，基因组DNA1％的琼脂糖凝胶电泳检测均呈现完整清晰条带没有拖尾，说明 DNA 样品的完整性好，也可通过DNA marker 推算出DNA浓度。
目的： 了解紫外吸收检测DNA浓度与纯度的原理，掌握测定方法。 原理： 核酸的最大吸收波长为260nm，蛋白质为280nm，在波长260nm时，1OD值相当于双链DNA浓度为50μg/ml，单链
寡核苷酸的含量为30μg/ml，可以据此来计算核酸样品的浓度,还可通过测定在260nm和280nm的OD值的比值
（OD260/OD280），估计核酸的纯度。纯净DNA的比值为1.8, RNA为2.0。若比值高于1.8说明DNA样品中的RNA尚未除
尽，若样品中含有酚和蛋白质将导致比值降低。270nm存在高吸收表明有酚的干扰。 紫外分光光度法只能用于测定浓度
大于0.25μg/ml的核酸溶液，对浓度更小的样品，可采用荧光分光光度法。
试剂与仪器： 提取的质粒DNA，紫外分光光度仪。 操作步骤：
1) 分光光度计先用水在260nm和280nm两个波长下校零。
2) 取质粒DNA样品2μl，用水稀释100倍，转入分光光度计的石英比色杯中。
3) 在260nm和280nm分别读出样品光密度值。如果样品浓度单位为μg/μl，则样品DNA浓度为OD 值的10倍，即如 OD260=0.1，则样品浓度即为1μg/μl。
4) 若OD260/OD280大于1.8，说明仍有RNA，可以考虑用RNA酶处理样品，若小于1.8，说
明样品中含有蛋白质或酚，应再用酚/氯仿抽提，以乙醇沉淀纯化DNA。
“1od=0.05ug/ul”这个说法很不严谨。按照我的理解，这句话的意思是：在光程为1cm的吸收池内，测得双链DNA的OD值为1时，DNA溶液的浓度为0.05μg/μL。 因为OD=εlc，这里OD=1，光程l通常都是1cm，双链DNA的吸收系数ε=0.02mL/(μg·cm)，那么浓度
c=OD/(εl)=1/[0.02mL/(μg·cm)*1cm]=50μg/mL=0.05μg/μL。
楼主的测定在类似条件下，所以l=1cm，ε=0.02mL/(μg·cm)，而OD=0.45，所以浓度c=OD/(εl)=0.45/[0.02mL/(μg·cm)*1cm]=22.5μg/mL=0.0225μg/μL。
实验准备工作：
1 所用离心管、枪头要洗净、烘干（最好灭菌）。 2 试剂配制：
1 M Tris-HCl (pH 8.0): 称取Tris-Base 121g, 加入约800 ml 水在磁力搅拌器上搅拌，使其充分溶解后加入浓盐酸调整pH至8.0后加水定溶至1000 ml. 灭菌后于室温保存。
0.5 M EDTA (pH 8.0): 称取EDTA-Na2盐 187 g 加入约 800 ml水，在磁力搅拌器上边搅拌边加入固体NaOH，当EDTA和NaOH均完全溶解，溶液变清时其pH值刚好达到8.0左右，再用pH试纸略加调整即可, 灭菌后于室温保存。
5.0 M NaCl: 称取NaCl 300 g, 加入蒸馏水约800 ml 于磁力搅拌器上充分搅拌，约5分钟后停止搅拌，静止2~3分钟，倒出上清液，再加入100 ml蒸馏水重复前面的步骤，直到NaCl充分溶解后定溶至1000 ml., 灭菌后于室温保存。 酚：氯仿：异戍醇（25：24：1）的配制：可参考《分子克隆》亦可按如下方法配制取重蒸酚100 ml ，蒸馏水50 ml，8-羟基喹咛0.05g 加入500 ml玻璃烧杯于磁力搅拌器上边加热边搅拌，待酚达到水饱和后加入18 g Tris-Base，等Tris-Base 完全溶解后加入100 ml氯仿：异戌醇（24：1），搅拌10~20分钟，静止约10分钟，除去上层水相后，装入棕色瓶，最后加入20 ml 0.1M的Tris-HCl保护液于4℃保存。 DNA Buffer的配制： 1 M Tris-HCl (pH 8.0) 0.5 M EDTA (pH 8.0): 5.0 M NaCl: H2O
100 ml 100 ml 300 ml 500 ml
灭菌后于室温下保存3个月左右，用时按1.5%往Buffer中加入CTAB，在电炉上烧开；在通风橱里加入1%的巯基乙醇( 现配现用)。
DNA的提取：
1 取2~5 g叶片或愈伤组织，加入适量液氮研碎，转入预冷的50ml离心管，
加入20 ml DNA提取缓冲液充分摇匀，于65℃水浴60~90 min，中途轻轻摇匀两次。
2 加入15 ml 氯仿：异戍醇（24：1）轻轻摇匀10分钟，于BECKMAN离心机
中4000 rpm离心15分钟。
3 取上清液于另一50 ml离心管加入10 ml 氯仿：异戍醇（24：1）重复步骤2。
4 吸上清液于一干净的50 ml 离心管，加入15 ml 冷冻的异丙醇，轻轻摇匀
后于-20℃冷冻半小时，4000 rpm离心10分钟。弃上清液，加入5 ml 76%的乙醇（含10 mM
NH4Ac）浸泡5 h（或过夜），中途换乙醇2-3次。
5 弃乙醇风干沉淀约半小时，加入3.0 ml TE缓冲液（10 mM Tris-HCl pH 8.0；
1 mM EDTA , pH 8.0），20 μl RNase A（10 mg/ml），37℃温浴过夜。 6 溶液转入一10 ml离心管，加入3.0 ml苯酚：氯仿：异戊醇（25：24：1）
充分颠倒混匀，4000 rpm离心15 min，吸上清液于另一10 ml的离心管中，（可重复一次）。
7 加入1 ml 5.0 M的NaCl和3.0 ml水饱和乙醚，充分混匀，4000 rpm离心5 min。
8 弃乙醚，用20 μl枪头挡住离心管管口内侧，用力下压枪头，使枪头与管壁
间形成一狭缝，让下清液从缝中流入另一10 ml离心管。
9 加入5 ml冷冻的异丙醇，轻轻摇匀后于-20℃冷冻半小时，4000 rpm离心
10分钟。弃上清液，加入3 ml 70%的乙醇浸泡4~6 h（或过夜），中途换乙醇2-3次。风干乙醇，加入500 μl TE溶解，或浸在乙醇中长期保存。 DNA检测
1 取DNA原液15 μl稀释至3.0 ml，用UV-1601型紫外分光光度计测定230 nm、 260 nm及280 nm的吸光值。
高质量的DNA要求：A260/A230>2.0； 1.7
2 将DNA原液适当稀释后，用1 Χ TAE，0.8%琼脂糖凝胶2V/cm电泳1 h进
行质量检测。
3 向一定量的DNA中加入限制性内切酶EcoR I至4-5U/μg DNA，37℃消化过
夜，用0.5 Χ TBE，0.8%琼脂糖凝胶2.5V/cm电泳3 h进行检测。
CTAB法微量提取DNA
1. 药品的配制: CTAB提取液：
(1)100mM Tris-HCl(PH 8.0),1.5M NaCl,50mM EDTA(PH 8.0) (2)1% PVP,2% CTAB
(3)取少许(1)加到(2)中，搅拌成糊状,后加(1)至足量,65℃水浴充分溶解备用。使用前要在65℃温浴一会儿，然后加入1-4%巯基乙醇,混均匀。 苯酚：氯仿：异戊醇（25∶24∶1）： 重蒸酚65℃水浴溶解，在烧杯中加入80ml温热的蒸馏水，加入少许8-羟基喹啉，溶解后加入100ml重蒸酚，再加入100ml氯仿：异戊醇（24：1），加入20克Tris Base，磁力搅拌器上搅拌1.5 h左右至停止搅拌后很快分层，然后装入棕色瓶中，4℃冰箱中储存备用。
2. 材料的采取与保存：
在超净工作台上，取试管苗叶片，放入无菌的1.5 ml离心管中，置于冰盒中，然后把装有叶片的离心管一起装在纱布袋中，置液氮中冷冻10分钟，取出后置于—70℃冰箱中可长期保存，需要用时，取出置于冰盒中。 3．DNA的粗提