编码：KF-SOP-07-13-2 标 题 起 草 人 起草日期 起草部门 质量管理部 微生物限度检查操作规程 共 19 页 第 1 页 审 核 人 审核日期 颁发部门 办公室 批 准 人 批准日期 生效日期 一、范围：本标准规定了微生物限度的检查方法和操作要求；适用于检品需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数、控制菌的检查。
二、引用标准：《中国药典》2015年版(通则1105-1106)
三、目录 1．微生物限度标准
2．设备、仪器及用具
3．消毒液、稀释剂、试液及培养基
4．检查总则（通则1105：非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法，通
则1106 非无菌产品微生物限度检查：控制菌检查法）
5．微生物计数法检查 6．控制菌检查法 7．实验技术
8. 附件 1．微生物限度标准
非无菌药用原料及辅料的微生物限度标准 药用原料及辅料 需氧菌总数(cfu/g 或 cfu/ml) 103 霉菌和酵母菌总数(cfu/g 或 cfu/ml) 102 控制菌 * *未做统一规定。 1.1成品微生物限度标准 法 定 标 准 需氧菌霉菌和酵控制菌 品 母菌总数总数名 (cfu/g 或 大肠埃沙门(cfu/g 或 cfu/ml) 希菌 菌 cfu/ml) 乳糖 ≤1000 ≤100 — 无水≤100 ≤10 乳糖 蔗糖 无 无 (1)．“—”为不得检出。 (2)．目测霉变者以不合格论。 (3)．“无”为标准依据或无相应规定。
无 ——/10g /100g 无 无 内 控 标 准 控制菌 需氧菌霉菌和酵母总数菌总数(cfu/g 大肠埃沙门(cfu/g 或 或 cfu/ml) 希菌 菌 cfu/ml) ≤100 ≤100 ≤100 ≤50 ≤10 ≤50 — —/10g — — —/100g — 编码：KF-SOP-07-13-2 标 题 微生物限度检查操作规程 共 19 页 第 2 页 1.2工艺用水微生物限度标准 法 定 标 准 品 名 生活饮用水 纯化水 需氧菌总数(cfu/ml) ≤100 ≤lOO 控制菌（MPN/100mL或CFU/100mL） 不得检出 不得检出 内 控 标 准 需氧菌总数(cfu/ml) ≤100 ≤80 控制菌（MPN/100mL或CFU/100mL） 不得检出 不得检出 1.3内包装材料微生物限度标准 品 名 (单位) 需氧菌总数 霉菌和酵控制菌 母菌总数 需氧菌总数 霉菌和酵母菌总数 控制菌 药用聚乙烯烃塑料袋≤1000cfu ≤100cfu — ≤100cfu ≤10cfu — 2(100cm) 说明： 1．“—”为每100 cm2中不得检出。2．目测霉变者以不合格论。3．“无”为标准依据或无相应规定。 2．设施、仪器及用具
2.1、设施：
2.1.1．微生物限度检查室及相关设施：微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。 2.1.2．其他设备：高压蒸汽灭菌器；细菌培养箱（30~35℃）；霉菌培养箱（25~28℃）；电炉（或其他适宜的加热装置）；恒温水浴；电热干燥箱（250~300℃）；电冰箱。生化试剂储存箱。 2.2仪器及器皿
2.2.1．菌落计数器；显微镜（1500X）；电子天平或药物天平（感量0.1g）；pH系列比色计。
2.2.2．玻璃器皿：锥形瓶（250~300ml，内装玻璃珠若干）、研钵（玻璃或陶瓷制，∮10~12cm）、培养皿（∮9 cm）、量筒（100 ml）、试管（18×180mm）及塞、吸管（1ml分度0.01， 10 ml分度0.1）、载玻片、盖玻片、玻璃消毒缸（带盖）。
2.2.3新购的玻璃器皿的清洁：先用流水冲洗，浸泡于1%~2%盐酸（工业用）液中约2~6小时，除去游离碱质，再用流水冲洗。用于化学分析的玻璃仪器，需用重铬酸钾清洁液浸泡数分钟后，再用流水冲洗，最后以纯化水涮洗2~3次，晾干备用。 2.3用过的玻璃器皿：
2.3.1未被病原微生物污染的器皿：可随时洗涤。用清水冲洗（或浸泡），除容量仪器外，可用毛刷和肥皂粉，内外刷洗，再用清水涮洗干净，晾干备用。容量仪器宜用清洁液浸泡或涮洗，再用流水冲洗，最后以纯化水涮洗2~3次。
编码：KF-SOP-07-13-2 标 题 微生物限度检查操作规程 共 19 页 第 3 页 2.3.2已被病原微生物污染的器皿：需先经过灭菌处理后再按常法洗涤。 试管及培养皿：先正放或直立于高压蒸汽灭菌器内，经121℃灭菌30 分钟。趁热倾出培养物，再以清水或用毛刷及肥皂粉刷洗，最后以流水涮净。
吸管：全部直立浸没于清洁液的长筒形容器中，筒底应衬有棉或橡皮垫，以防管尖损坏。24小时后，逐支用流水反复冲洗洁净，晾干后包扎灭菌备用。
载、盖玻片：应分别浸泡于清洁液12~24小时后，取出用流水冲洗，再放入3%~5%肥皂水或5%碳酸钠液内煮沸10~15 分钟，待自然冷却后，再用流水冲洗。沥干后置95%乙醇中浸泡，晾干备用。 2，3，3玻璃器皿用前应洗涤干净，无残留抗菌物质。吸管口上端距0.5 cm处塞入约2cm的适宜疏松棉花，置吸管桶内或牛皮纸袋中。锥形瓶、量筒、试管均应加棉塞或硅胶塞，若用振荡器制备混悬液时，尚需用玻璃纸包裹瓶塞（以免振荡时供试液污染瓶塞），再用牛皮纸包扎。玻璃器皿，均于160℃干热灭菌2小时或高压蒸汽121℃灭菌30 分钟，烘干备用。 2.4用具
2.4.1大、小橡皮乳头（放于干净带盖的容器中，并应定期用70%~75%乙醇溶液浸泡）。 2.4.2无菌衣、帽、口罩、手套（洗净后配套，用牛皮纸包严）灭菌，备用。也可用一次性无菌衣、帽、口罩、手套。
2.4.3接种环（白铱金或镍铬合金，环径4~5mm、长度6~10cm）、乙醇灯、乙醇棉球或碘伏棉球、灭菌剪刀或灭菌手术刀和灭菌镊子、灭菌称样纸、不锈钢药匙、试管架、火柴、记号笔、白瓷盘、洗手盆、陶瓦盖（12 cm）、实验记录纸等。 3消毒液、稀释剂、试液及培养基
3.1消毒液、稀释剂及试液。
3.1.1 0.1%苯扎溴铵溶液：供洗手、擦拭操作台面用。
3.1.2 5%石碳酸溶液：配制后装入玻璃消毒缸内，供消毒带菌吸管用，抑或选用其他适宜消毒液。
3.1.3．75%乙醇溶液：配好后制乙醇棉球，供擦手、擦拭操作工具用。
3.1.4．0.9%无菌氯化钠溶液：取氯化钠9.0g，加水使溶解成1000ml，121℃灭菌20分钟。
3.1.5．司盘-80、单硬脂酸甘油酯、吐温-80：供非水溶性供试品供试液制备用。 3.1.6．无菌0.1%氯化三苯四氮唑溶液（TTC）：取氯化三苯四氮唑0.1g，加水使溶解成10 ml。
3.1.7．甲基红指示液：取甲基红0.1g，加入95%乙醇300ml，水适量，使溶解，再加水至500ml。
3.1.8．V-P试液：①氢氧化钾试液：取氢氧化钾40.0g，加水使溶解成100ml；②α-萘酚乙醇试液：取α-萘酚6.0g，加无水乙醇使溶解成100ml。
3.1.9．革兰染色液：①沙黄染液：取沙黄0.25g，加95%的乙醇10ml，使完全溶解后，加水至100ml；②结晶紫染液：取结晶紫1.0g，加95%的乙醇20ml，使溶解，加1%的草酸铵溶液80ml，混匀。静置48小时使用，置密闭棕色瓶中储存；③碘试液：取碘化钾2.0g，加水3~5ml使溶解，加入碘片1.0g，使全部溶解后，加水稀释至300ml，置密
编码：KF-SOP-07-13-2 标 题 微生物限度检查操作规程 共 19 页 第 4 页 闭棕色瓶中储存。 3.1.10．中性红指示液：取中性红1.0g，研细，加95%乙醇60ml，使溶解，再加水到100ml。变色范围 pH6.8~8.0（红→黄）。
3.1.11．亚甲蓝指示液：取亚甲蓝0.5g，加水使溶解成100ml。
3.1.12．溴麝香草酚蓝指示液：取溴麝香草酚蓝0.4g，加1mol/L氢氧化钠溶液0.64ml使溶解，再加水至100ml。变色范围 pH6.0~7.6（黄→蓝）。
3.1.13．酸性品红指示液：以酸性品红0.5g，加水100ml使溶解，再逐渐加1mol/L氢氧化钠溶液16ml，每加1滴均应将溶液充分摇匀后再加第二滴，直至溶液呈草黄色；于沸水内保持15分钟，再静置2小时，滤过，即得。优点：无色，在倒管内早期发酵易观察，不易被还原。变色范围 pH6.0~7.4（红→黄）。
3.1.14．曙红钠指示液：取曙红钠2.0g，加水使溶解成100ml。
3.1.15．靛基质试液：取对二甲氨基苯甲醛1.0g，加入95%乙醇95ml，充分振摇，使完全溶解后，取浓盐酸20ml徐徐滴入，边加边振摇，以免骤热导致溶液色泽变深，置 冰箱保存，备用。 3.2培养基
3.2.1．培养基的制备及储存
3,2,1,1溶化：一般应放在玻璃器皿或搪瓷器内。加入纯化水，隔水加热以促其溶解，加热时应经常搅拌，防止焦结，待其溶解后补足水分。
3.2.1.2在使用干燥培养基时，先将纯化水按定量加入容器中，然后称取一定量培养基干粉放入水中，静置10~15 分钟，搅拌，振荡，或延长时间以促进溶解，一般不要加热，必要时加热，但时间不宜过长，温度不宜过高，避免某些营养成分被破坏。
3.2.1.3校正酸碱度：培养基必须有适当的pH值。测定pH值是培养基配制过程中的重要步骤之一，干燥培养基一般已校正过pH值，用时也必须再验证。pH值测定时，一般用指示剂滴入培养基中观察其颜色的变化，或用pH计校正，如与所需pH值不符，可用酸或碱液加以校正。一般用氢氧化钠校正的弱碱性培养基，高压灭菌前培养基的pH值高0.2左右，灭菌后基本合适。调整pH值后要加热过滤，使培养基澄清。 3.2.2培养基的分装：
3.2.2.1液体、半固体培养基一般在高压灭菌前分装，约装试管容积的1/3，在灭菌后还要加入成分的液体、半固体培养基，灭菌后再分装于灭菌试管或锥形瓶中。
3.2.2.2固体培养基一般分装在250 ml、500 ml锥形瓶中，高压灭菌后根据需要分装平皿或试管。
平皿：如倾注平皿，应在无菌室中放置3～4小时，如用塑料平皿须在35℃培养箱中倒置30～60 分钟。水蒸气会自然蒸发。
斜面：制备低层斜面分装于试管，约占容积的1/5，灭菌后趁热斜放于细玻璃棒和木杆上，使成斜度，分装时注意管口和瓶塞上勿沾有培养基，避免污染。
制备高层斜面分装于试管，约占试管容积的1/3，灭菌后趁热放置成高层短斜面，待其凝固后应用。 3.2.3培养基的灭菌：培养基的灭菌多采用高压蒸汽灭菌，各种培养基的灭菌时间和压力，按其成分不同而定。普通培养基多采用121℃、103.42kPa灭菌 15 分钟，但容器和装量较大时，可延长至20 分钟。高压灭菌应严格按照操作规程进行，必须逐渐加热，彻底排除灭菌器内的冷空气，再逐渐升压保持预定的压力和时间，达到全杀灭微生物的目的。
编码：KF-SOP-07-13-2 标 题 微生物限度检查操作规程 共 19 页 第 5 页 3.2.4培养基的储存：保存培养基的时间需视培养基中水分蒸发的程度及有无污染而定，已制备好培养基要保存于冷暗处或冰箱中，但由于各种培养基的性质不同，不可能 固定一个保存期限。制备好的平板或试管培养基，为防止水分蒸发，应置于塑料袋内，4℃保存，可延长使用期限。微量生化反应管熔封于细玻管内，室温下可保存1年左右。 3.3注意事项：
3.3.1采用干燥培养基时，按说明配制，应对灭菌后的培养基pH值进行校验。若为自配培养基，原料应挑选，琼脂凝固力应测定，以确定配制时琼脂的用量。试剂规格要求应为化学纯（CP）以上规格，其中不能含有对细菌、霉菌、大肠杆菌生长有害的抑制物。3.3.2配制的培养基不应该有沉淀，如有沉淀，应于溶化后趁热过滤，并应于2小时内灭菌，避免细菌繁殖。
3.3.3培养基的分装量不得超过容器的2/3，以免灭菌时溢出。包装时，塞子必须塞 紧，以免松动或脱落造成染菌。
3.3.4配制培养基的pH值测定时，其波动范围应在规定的pH±0.2之内，还需注意高压灭菌后的pH值变化。
3.3.5每批培养基均应有配制记录，包括名称、配制量（各种成分用量）、配制者、校对者、配制日期以及性能和无菌试验。
3.3.6每批培养基在用于样品的分离鉴定之前均应作性能试验，以保证微生物检验的质量。性能试验须用已知标准菌株进行预试，符合要求方可应用。
3.3.7棉塞以普通棉花制作，棉塞松紧应适宜，过松易污染杂菌，过紧影响透气性；每次用后需高压灭菌并随即烘干，要防尘、防霉；变硬无弹力时需更换。
3.3.8各种试管应先配上合适的棉塞，待高压灭菌后再分装培养基，可防止污染。
3.3.9培养基配制时，应先将有沉淀物的原料如蛋白胨、牛肉膏、盐类和琼脂配好，经调节pH值、加热并煮沸溶化后再滤清；滤清时注意趁热过滤，滤除异物、沉淀后，应将蒸发失去的溶液量按原溶液量加纯化水补足。
3.3.10应严格遵守各种培养基规定的灭菌温度和时间，灭菌后培养基不得有混浊现象，每瓶配制并灭菌后的培养基、稀释剂均应在外表清楚标明灭菌日期。 3.3.11每批稀释剂、培养基均应有空白试验，合格后方能使用。
3.3.12灭菌后的培养基在冷暗处保存，放置时间不能过长，一般在两周内用完。久存培养基失水过多、固体干涸变形、液体出现沉淀、棉塞松弛或脱落者均不得使用。已熔化的培养基应一次用完，开启后不宜再用。
3.3.13勿用电炉直接熔化琼脂培养基，以免营养成份过度受热而破坏，应用水浴或微波炉加热。
4. 检查总则（1105非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法）
4.1微生物计数法适用范围：系用于能在有氧条件下生长的嗜温细菌和真菌的计数。当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时，应按下述规定进行检验，包括样品的取样量和结果的判断等。除另有规定外，本法不适用于活菌制剂的检査。如供试品有抗菌活性，应尽可能去除或中和。供试品检査时，若使用了中和剂或灭活剂，应确认其有效性及对微生物无毒性。供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。