实验室常用缓冲液配置方案
1)1 M Tris-HCl (pH7.4, 7.6, 8.0) 组份浓度：1 M Tris-HCl 配制量：1 L 配制方法：
1. 称量121.1 g Tris置于1 L烧杯中。 2. 加入约800 ml的去离子水，充分搅拌溶解。 3. 按下表量加入浓盐酸调节所需要的pH值。
PH值 7.4 7.6 8.0 浓HCl 约70ml 约60ml 约42ml 4. 将溶液定容至1 L。
5. 高温高压灭菌后，室温保存。
注意：应使溶液冷却至室温后再调定pH值，因为Tris溶液的pH值随温度的变化差异很大，温度每升高1℃，溶液的pH值大约降低0.03个单位。 2)10×TE Buffer (pH7.4, 7.6, 8.0)
组份浓度：100 mM Tris-HCl, 10 mM EDTA 配制量：1 L 配制方法：
1. 量取下列溶液，置于1 L烧杯中。
1M Tris－HCl Buffer（PH7.4，7.6，8.0） 500mM EDTA(PH8.0) 100ml 20ml 2. 向烧杯中加入约800 ml的去离子水，均匀混合。 3. 将溶液定容至1 L后，高温高压灭菌。 4. 室温保存。
3)1.5 M Tris-HCl (pH8.8) 组份浓度：1.5 M Tris-HCl 配制量：1 L 配制方法：
1. 称量181.7 g Tris置于1 L烧杯中。 2. 加入约800 ml的去离子水，充分搅拌溶解。 3. 用浓盐酸调节pH值至8.8。 4. 将溶液定容至1 L。
5. 高温高压灭菌后，室温保存。
注意：应使溶液冷却至室温后再调定pH值，因为Tris溶液的pH值随温度的变化差异很大，温度每升高1℃，溶液的pH值大约降低0.03个单位。 4)3 M 醋酸钠(pH5.2) 组份浓度：3M 醋酸钠 配制量：100ml 配制方法：
1.称量40.8g NaAc·3H2O置于100-200ml烧杯中，加入月40ml的去离子水搅拌溶解 2.加入冰醋酸调节pH值至5.2
3.加去离子水将溶液定容至100ml 4高温高压灭菌后，室温保存。 5)PBS Buffer
组份浓度：137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 2 mM KH2PO4 配制量：1 L 配制方法：
1. 称量下列试剂，置于1 L烧杯中。
NaCl KCl Na2HPO4 KH2PO4 8g 0.2g 1.42g 0.27g 2. 向烧杯中加入约800 ml的去离子水，充分搅拌溶解。
3. 滴加浓盐酸将pH值调节至7.4，然后加入去离子水将溶液定容至1 L。 4. 高温高压灭菌后，室温保存。
注意：上述PBS Buffer中无二价阳离子，如需要，可在配方中补充1 mM CaCl2和0.5 mM MgCl2。 6)10 M 醋酸铵
组份浓度：10 M 醋酸铵 配制量：100 ml 配制方法：
1. 称量77.1 g醋酸铵置于100～200 ml烧杯中，加入约30 ml的去离子水搅拌溶解。 2. 加去离子水将溶液定容至100 ml。 3. 使用0.22 mm滤膜过滤除菌。 4. 密封瓶口于室温保存。
注意：醋酸铵受热易分解，所以不能高温高压灭菌。 7)苯酚/氯仿/异戊醇 (25 : 24 : 1) 配制方法：
1. 说明：从核酸样品中除去蛋白质时常常使用苯酚/氯仿/异戊醇（25 : 24 : 1)。氯仿可使蛋白质变性并有助于液相与有机相的分离，而异戊醇则有助于消除抽提过程中出现的气泡。
2. 配制方法：将Tris-HCl平衡苯酚与等体积的氯仿/异戊醇（24 : 1）混合均匀后，移入棕色玻璃瓶中4℃保存。
8）10％ (W/V) SDS 组份浓度：10％ (W/V)SDS 配制量：100ml 配制方法：
1.称量10g高纯度的SDS置于100-200ml烧杯中，加入约80ml的去离子水，68℃加入溶解 2.滴加浓盐酸调节pH值至7.2 3.将溶液定容至100ml后，室温保存。 9）2 N NaOH 组份浓度：2 N NaOH 配制量：100 ml 配制方法：
1. 量取80 ml去离子水置于100～200 ml塑料烧杯中（NaOH溶解过程中大量放热，有可能使玻璃烧杯炸裂)。
2. 称取8 g NaOH小心地逐渐加入到烧杯中，边加边搅拌。
3. 待NaOH完全溶解后，用去离子水将溶液体积定容至100 ml。 4. 将溶液转移至塑料容器中后，室温保存。 10）2.5 N HCl 组份浓度：2.5 N HCl 配制量：100 ml 配制方法：
1. 在78.4 ml的去离子水中加入21.6 ml的浓盐酸（11.6 N)，均匀混合。 2. 室温保存。 11）5 M NaCl 组份浓度：5 M NaCl 配制量：1 L 配制方法：
1. 称取292.2 g NaCl置于1 L烧杯中，加入约800 ml的去离子水后搅拌溶解。 2. 加去离子水将溶液定容至1 L后，适量分成小份。 3. 高温高压灭菌后，4℃保存。 11）20％ (W/V) Glucose 组份浓度：20％ (W/V) Glucose 配制量：100 ml 配制方法：
1. 称取20 g Glucose置于100～200 ml烧杯中，加入约80 ml的去离子水后，搅拌溶解。 2. 加去离子水将溶液定容至100 ml。 3. 高温高压灭菌后，4℃保存。 12）Solution I(质粒提取用)
组份浓度：25 mM Tris-HCl（pH8.0), 10 mM EDTA, 50 mM Glucose 配制量：1 L 配制方法：
1. 量取下列溶液，置于1 L烧杯中。
1M Tris-HCl（PH8.0） 0.5M EDTA（PH8.0） 20％Glucose（1.11M） dH2O 25ml 20ml 45ml 910ml 2. 高温高压灭菌后，4℃保存。
3. 使用前每50 ml的Solution I中加入2 ml的RNase A（20 mg/ml)。 13）Solution II(质粒提取用)
组份浓度：200mM NaOH，1％(W/V)SDS 配制量：500ml 配制方法：
1.量取下列溶液，置于500ml烧杯中 10％ SDS 50ml 2N NaOH 50ml
2.加灭菌水定容至500ml，充分混匀
3.室温保存，此溶液保存时间最好不要超过一个月 注意：SDS易产生气泡，不要剧烈搅拌
14）Solution III(质粒提取用)
组份浓度：3 M KOAc, 5 M CH3COOH 配制量：500 ml 配制方法：
1. 称量下列试剂，置于500 ml烧杯中。
KOAc CH3COOH 147g 57.5ml 2. 加入300 ml去离子水后搅拌溶解。 3. 加去离子水将溶液定容至500 ml。 4. 高温高压灭菌后，4℃保存。 15）0.5 M EDTA(pH8.0) 组份浓度：0.5 M EDTA 配制量：1 L 配制方法：
称取186.1 g Na2EDTA·2H2O，置于1 L烧杯中。 2. 加入约800 ml的去离子水，充分搅拌。 3. 用NaOH调节pH值至8.0（约20 g NaOH)。 注意：pH值至8.0时，EDTA才能完全溶解。 4. 加去离子水将溶液定容至1 L。 5. 适量分成小份后，高温高压灭菌。 6. 室温保存。 16）1 M DTT 组份浓度：1 M DTT 配制量：20 ml 配制方法：
1. 称取3.09 g DTT，加入到50 ml塑料离心管内。
2. 加20 ml的0.01 M NaOAc（pH5.2)，溶解后使用0.22 mm滤器过滤除菌。 3. 适量分成小份后，-20℃保存。
17）10 mM ATP 组份浓度：10 mM ATP 配制量：20 ml 配制方法：
1. 称取121 mg Na2ATP·3H2O，加入到50 ml塑料离心管内。 2. 加20 ml的25 mM Tris-HCl（pH8.0)，搅拌溶解。 3. 适量分成小份后，-20℃保存。