细胞生物学讲义(翟中和-高教版)(6)

2019-05-26 15:26

复2~3次效果会好一些。

差速离心只用于分离大小悬殊的细胞,更多用于分离细胞器。通过差速离心可将细胞器初步分离,常需进一步通过密度梯离心再行分离纯化。

(二)、密度梯度离心(density gradient centrifugation)

用一定的介质在离心管内形成一连续或不连续的密度梯度,将细胞混悬液或匀浆置于介质的顶部,通过重力或离心力场的作用使细胞分层、分离。这类分离又可分为速度沉降和等密度沉降平衡两种。密度梯度离心常用的介质为氯化铯,蔗糖和多聚蔗糖。分离活细胞的介质要求:1)能产生密度梯度,且密度高时,粘度不高;2)PH中性或易调为中性;3)浓度大时渗透压不大;4)对细胞无毒。

1、速度沉降

速度沉降(velocity sedimentation)主要用于分离密度相近而大小不等的细胞或细胞器。这种降方法所采用的介质密度较低,介质的最大密度应小于被分离生物颗粒的最小密度。

生物颗粒(细胞或细器)在十分平缓的密度梯度介质中按各自的沉降系数以不同的速度沉降而达到分离。 2、等密度沉降

等密度沉降(isopycnic sedimentation)适用于分离密度不等的颗粒。

细胞或细胞器在连续梯度的介质中经足够大离心力和是够长时间则沉降或漂浮到与自身密度相等的介质处,并停留在那里达到平衡,从而将不同密度的细胞或细胞器分离。

等密度沉降通常在较高密度的介质中进行。介质的最高密度应大于被分离组分的最大密度,而且介质的梯度要求较高的陡度,不能太平缓。再者,这种方法所需要的力场通常比速率沉降法大10~100倍,故往往需要高速或超速离心,离心时间也较长。大的离心力、长的离心时间都对细胞不利。大细胞比小细胞更易受高离心力的损伤,而且停留在等密度介质中的细胞比处在移动中的细胞受到更大的损伤。因此,这种方法适于分离细胞器,而不太适于分离和纯化细胞。 2.2 显示方法

1.金属沉淀法:利用金属化合物在反应过程中生成有色沉淀,借以辨认所检查的物质或酶活性。如磷酸酶分解磷酸酯底物后,反应产物最终生成CoS或PbS有色沉淀,而显示出酶活性。

2. 偶氮偶联法:酚类化合物与偶氮染料结合后可以形成耐晒染料。

3. Schiff反应:细胞中的醛基可使Schiff试剂中的无色品红变为红色。这种反应通常用于显示糖和脱氧核糖核酸(Feulgen反应)。

4. 联苯胺反应:过氧化物酶分解H202。产生新生氧,后者再将无色的联苯胺氧化成联苯胺蓝,进而变成棕色化合物。

5. 普鲁士蓝反应:三价铁与酸性亚铁氰化钾作用,形成普鲁士蓝。 6. Formazane反应:显示脱氢酶。 7. “Nadi”反应:显示细胞色素氧化酶。

8. 脂溶染色法:借苏丹染料溶于脂类而使脂类显色。 9. 茚三酮反应:显示蛋白质。 2.3 Immunocyto chemistry

? 根据免疫学原理,利用抗体同特定抗原专一结合,对抗原进行定位测定的技术。常用的标记物有荧光素和酶。

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? 免疫荧光法(immunofluorescent technique):常用的萤光素有异硫氰酸荧光素、罗丹明等。 ? 酶标免疫法(enzyme-labeled antibody method):用酶代替荧光素代替荧光素与抗体耦联。常用的酶有辣根过氧化物酶,酶与底物发生反应后形成不透明的沉积物,从而显示出抗原存在的部位。

疫细胞化学(immunocyto chemistry)是根据免疫学原理,利用抗体同特定抗原专一结合,对抗原进行定位测定的技术。抗原主要为大分子或与大分子相结合的小分子;抗体则是由浆细胞针对特定的抗原分泌的γ球蛋白。如果将抗体结合上标记物,再与组织中的抗原发生反应,即可在光镜或电镜下显示出该抗原存在于组织中的部位。

常用的标记物有荧光素和酶。荧光素标记的称为免疫荧光法(immunofluorescent technique)常用的萤光素有异硫氰酸荧光素(fluorescein isothiocyanate)、罗丹明(rhodamine)等。酶标记的称为酶标免疫法(enzyme-labeled antibody method),常用的酶有辣根过氧化物酶(horseradish peroxidase),酶与底物发生反应后形成不透明的沉积物,从而显示出抗原存在的部位。

抗体与抗原的结合方法可分为直接法和间接法两种,直接法是将带有标记的抗体与抗原反应,显示出抗原存在的部位。而间接法则是在抗体抗原初级反应的基础上,再用带标记的次级抗体同初级抗体反应,从而使初级反应得到放大,显示增强。 2.4 Molecular hybridization

分子杂交技术(molecular hybridization)是在研究DNA分子复性变化基础上发展起来的一种技术。其原理是,具有互补核苷酸序列的两条单链核苷酸分子片段,在适当条件下,通过氢键结合,形成DNA-DNA,DNA-RNA或RNA-RNA杂交的双链分子。这种技术可用来测定单链分子核苷酸序列间是否具有互补关系。 (一)、原位杂交(in situ hybridization)。

用来检测染色体上的特殊DNA序列。最初是使用带放射性的DNA探针,通过放射自显影来显示位置。后来又发明了免疫探针法,将探针核苷酸的侧链加以改造,探针杂交后,其侧链可被带有荧光标记的抗体所识别,从而显示出位置。 (二)、Southern杂交

是体外分析特异DNA序列的方法,操作时先用限制性内切酶将核DNA或线粒体DNA切成DNA片段,经凝胶电泳分离后,转移到醋酸纤维薄膜上,再用标记的探针杂交,通过放射自显影,即可辨认出与探针互补的特殊核苷序列。

将RNA转移到薄膜上,用探针杂交,则称为Northern杂交,RNA印迹术;蛋白质印迹术(Western blotting);Eastern blotting(Western blotting的变形) 当用凝胶进行抗原抗体反应,再进行印迹的方法)。 2.5 Radioautography/autoradiography

放射自显影术(radioautography;autoradiography)用于研究标记化合物在机体、组织和细胞中的分布、定位、排出以及合成、更新、作用机理、作用部位等等。

原理:将放射性同位素(如14C和3H)标记的化合物导入生物体内,经过一段时间后,将标本制成切片或涂片,涂上卤化银乳胶,经一定时间的放射性曝光,组织中的放射性即可使乳胶感光。

实验室一般常选用14C和3H标记。一般常用3H胸腺嘧啶脱氧核苷(3H-TDR)来显示DNA,用3H尿嘧啶核苷(3H-UDR)显示RNA;用3H氨基酸研究蛋白质,研究多糖则用3H甘露糖、3H岩藻糖等。 2.6 Flow cytometer

用途:对单个细胞进行快速定量分析与分选的一门技术。

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原理:包在鞘液中的细胞通过高频振荡控制的喷嘴,形成包含单个细胞的液滴,在激光束的照射下,这些细胞发出散射光和荧光,经探测器检测,转换为电信号,送入计算机处理,输出统计结果,并可根据这些性质分选出高纯度的细胞亚群,分离纯度可达99%。包被细胞的液流称为鞘液,所用仪器称为流式细胞计(flow cytometer)。

Addition:细胞电泳

各种细胞或处于不同生理状态的同种细胞荷电量有所不同,故在一定的电场中的泳动速度不同。在恒定的电场条件下,同种细胞的电泳速度相当稳定,因而可通过测定电泳速度来推算出细胞的ξ电位。ξ电位常因细胞生理状态和病理状态而异,因此在诊断疾病上有一定价值。此外由于不同类型的细胞在电场中的泳动速度不同,细胞电泳尚可用来分离不同种类的细胞,例如可把淋巴样细胞与造血细胞分开。

3 Cell Culture & Cell Engineering

3.1 Cell culture

细胞培养技术(cell culture)就是在体外模拟体内的生理环境,培养从机体中取出的细胞,并使之生长和生存的技术。

高等生物是由多细胞构成的整体,在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内(in vivo)的功能活动是十分困难的。但是如果把活细胞拿到体外(in vitro)培养进行观察和研究,则要方便得多。活细胞离体后要在一定的生理条件下才能存活和进行生理活动,特别是高等动植物细胞要求的生存条件极其严格,稍有不适就要死亡。所以细胞培养技术(cell culture)就是选用最佳生存条件对活细胞进行培养和研究的技术。

动物细胞的生存环境与植物细胞差别很大,因而二者的培养方法很不相同。 (一)动物细胞培养

细胞培养方式大致可分为两种:一种是群体培养(mass culture),将含有一定数量细胞的悬液置于培养瓶中,让细胞贴壁生长,汇合(confluence)后形成均匀的单细胞层;另一种是克隆培养(clonal culture),将高度稀释的游离细胞悬液加入培养瓶中,各个细胞贴壁后,彼此距离较远,经过生长增殖每一个细胞形成一个细胞集落,称为克隆(clone)。一个细胞克隆中的所有细胞均来源于同一个祖先细胞。此外,为了制取细胞产品而设计了转鼓培养法,使用大容量的圆培养瓶,在培养过程中不断地转动,使培养的细胞始终处于悬浮状态之中而不贴壁。

正常细胞培养的世代数有限,只有癌细胞和发生转化的细胞才能无限生长下去。所谓转化即是指正常细胞在某种因子的作用下发生突变而具有癌性的细胞。目前世界上许多实验室所广泛传用的HeLa细胞系就是1951年从一位名叫Henrietta Lacks的妇女身上取下的宫颈癌细胞培养而成。此细胞系一直延用至今。

1.原代培养 (primary culture):从动物机体取出的进行培养的细胞群。原代培养的细胞生长比较缓慢,而且繁殖一定的代数后(一般10代以内)停止生长,需要从更换培养基。将细胞从一个培养瓶转移到另外一个培养瓶即称为传代或传代培养(Passage)。

2.细胞株(cell strain):从原代培养细胞群中筛选出的具有特定性质或标志的细胞群,能够繁殖50代左右,在培养过程中其特征始终保持。

3. 细胞系(cell line):从肿瘤组织培养建立的细胞群或培养过程中发生突变或转化的细胞,在培养条件下可无限繁殖

4.克隆(clone):亦称无性繁殖系或简称无性系。对细胞来说,克隆是指由同一个祖先细胞通过有丝分裂产生的遗传性状一致的细胞群。

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(二)植物细胞培养

植物细胞培养主要有如下几种技术:

1. 组织培养:诱发产生愈伤组织,如果条件适宜,可培养出再生植株。用于研究植物的生长发育、分化和遗传变异;进行无性繁殖;制取代谢产物。

2. 悬浮细胞培养:在愈伤组织培养技术基础上发展起来的一种培养技术。适合于进行产业化大规模细胞培养,制取植物代谢产物。

3. 原生质体培养:脱壁后的植物细胞称为原生质体(protoplast),其特点是:①比较容易摄取外来的遗传物质,如DNA;②便于进行细胞融合,形成杂交细胞;③与完整细胞一样具有全能性,仍可产生细胞壁,经诱导分化成完整植株:

4. 单倍体培养:通过花药或花粉培养可获得单倍体植株,经人为加倍后可得到完全纯合的个体。 Addition: 非细胞体系Cell free system,来源于细胞,而不具有完整的细胞结构,但包含了进行正常生物学反应所需的物质组成。(如功能体系和酶反应体系等)的体系即为非细胞体系。 3.2 Cell engineering

用细胞生物学和分子生物学的理论、方法和技术,按人们的预定设计蓝图有计划的保存、改变和创造细胞遗传物质,以产生新的物种和品系,或大规模培养组织细胞以获得生物产品。

该技术在细胞和亚细胞水平上开辟了基因重组的新途径,不需分离、提纯、剪切、拼接等基因操作,只需将遗传物质直接转入受体细胞,就可形成杂交细胞。 主要技术领域

细胞(组织、器官)培养:in vivo在体、活体、生物体内;in vitro离体、生物体外。 细胞融合(体细胞杂交、细胞并合) 细胞拆合(细胞质工程、细胞器移植) 染色体(组)工程:

繁殖生物学技术,胚胎冷冻技术、试管婴儿、生物复制、胚胎移植、发育工程、胚胎工程、胚胎分割技术、胚胎融合技术、嵌合体。

组分移植技术,将细胞的组分(核、质、染色体、甚至基因)直接移植到另一个细胞中去的技术 3.2.1 细胞融合

通过培养和诱导,两个或多个细胞合并成一个双核或多核细胞的过程称为细胞融合(cell fusion)或细胞杂交(cell hybridization)。

诱导细胞融合的方法:生物方法(仙台病毒、副流感病毒和新城鸡瘟病毒)、化学方法(聚乙二醇PEG)、物理方法(电击和激光)。

? 同核体 homokaryon:相同基因型的细胞融合而成。 ? 异核体 heterokaryon:不同基因型的细胞融合而成。

? 融合核细胞 synkaryon:通过细胞杂交形成的单核子细胞称融合核细胞 3.2.2 单克隆抗体 Monoclonal antibody

正常淋巴细胞(如小鼠脾细胞)具有分泌抗体的能力,但不能长期培养,瘤细胞(如骨髓瘤)可以在体外长期培养,但不分泌抗体。于是英国人Kohler和Milstein 1975将两种细胞杂交而创立了单克隆抗体技术,Monoclonal antibody,获1984年诺贝尔医学及生理学奖(M & P)。

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3.2.3 显微操作技术 Micromanipulation

Micromanipulation,用显微操作装置对细胞进行解剖和显微注射(micro injection)的技术。 Chapter Ⅳ Plasma Membrane & Cell Surface

一、教学目的和要求:

通过对本节的学习主要使学生掌握如下知识内容:细胞质膜的结构、功能;细胞膜骨架的结构特征;细胞表面的特化结构;细胞外被和细胞外基质;细胞连接和细胞表面粘着因子。

培养学生认识细胞的微观性和动态性特征;将本节所学内容和其他学科的知识融会贯通,提高综合分析问题的能力。 二、教材分析:

概述:本章内容在全部课程中都占有重要地位,学生能否对“生物膜”有正确、清晰的认识关系到能否学习好多个后续章节,所用教材在主要知识点方面阐述清晰,在少数知识点过于珍惜笔墨,学生在自学过程中会有较多疑问。

教学重点:流动镶嵌模型的主要特点;生物膜的流动性和不对称性;细胞连接的方式和特点;细胞外基质的主要成分和功能。

教学难点:流动镶嵌模型的主要特点;生物膜的流动性和不对称性;膜骨架的结构和功能。 三、教学设想:

教材处理:尊重教材编排,制作课件时主要以选用教材为蓝本,以免使学生感到有较大的跳跃;对教材的薄弱环节加入内容;针对其微观结构添加大量的示范图片。

教学方法:主要采用讲授法和例证法,辅以提问和讨论。 教具:CAI课件

四、教学内容:(8学时)

细胞膜(cell membrane)又称质膜(plasma membrane),是指围绕在细胞最外层,由脂类和蛋白质组成的薄膜。

它不仅是区分细胞内部与周围环境的动态屏障,更是细胞物质交换和信息传递的通道。围绕各种细胞器的膜,称为细胞内膜。质膜和内膜在起源、结构和化学组成的等方面具有相似性,故总称为生物膜(biomembrane)。生物膜是细胞进行生命活动的重要物质基础,细胞的能量转换、蛋白质合成、物质运输、信息传递、细胞运动等活动都与膜的作用有密切的关系。

质膜表面寡糖链形成细胞外被(cell coat)或糖萼(glycocalyx);质膜下的表层溶胶中具有细胞骨架成分组成的网络结构,除对质膜有支持作用外,还与维持质膜的功能有关,所以这部分细胞骨架又称为膜骨架。

细胞外被、质膜和表层胞质溶胶构成细胞表面。

1 Plasma membrane

1.1 A history of studies on plasma membrane

1. E. Overton 1895 发现凡是溶于脂肪的物质很容易透过植物的细胞膜,而不溶于脂肪的物质不易透过细胞膜,因此推测细胞膜由连续的脂类物质组成。

2. E. Gorter & F. Grendel 1925 用有机溶剂提取了人类红细胞质膜的脂类成分,将其铺展在水面,测出膜脂展开的面积二倍于细胞表面积,因而推测细胞膜由双层脂分子组成。

3. J. Danielli & H. Davson 1935 发现质膜的表面张力比油-水界面的张力低得多,推测膜中含有蛋白

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