2.1.4 超滤法
精密量取样品溶液Ⅰ 100 mL，加水稀释至药液浓度0.05 g/mL，在120 kPa压力下，采用截留分子量为50 k的超滤膜滤过，滤液浓缩并定容至250 mL，作为样品溶液Ⅳ。
2.2 总多糖含量测定
2.2.1 葡萄糖标准曲线的绘制
精密称取干燥至恒重的无水葡萄糖0.055 6 g，加水溶解并定容于50 mL量瓶中，制成每1 mL含1.112 mg的溶液，作为对照品溶液。分别精密吸取0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mL至50 mL量瓶中，加水至刻度，摇匀，精密吸取上述各浓度溶液2 mL，分别加入2%苯酚溶液1 mL，摇匀，迅速加入浓硫酸5 mL，摇匀，静置5 min，至沸水浴中加热15 min，取出，快速用冷水冷却至室温。以水为空白，同样显色操作制备空白对照，于紫外可见分光光度计490 nm波长处测其吸光度。以葡萄糖毫克数为横坐标，以吸光度为纵坐标，得回归方程Y=2.8122X+0.1406，r=0.9993。葡萄糖在0.02224～0.13344 mg范围内与吸光度呈良好线性关系。
2.2.2 供试品溶液制备
分别精密量取样品溶液Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ各100 mL，加乙醇使含醇量达85%，静置，滤过，滤渣分别用无水乙醇、丙酮洗涤，干燥，加水溶解并定容至25 mL，分别作为供试品溶液1、2、3、4。
2.2.3 稳定性考察
精密量取供试品溶液Ⅰ 100 μL，置25 mL 刻度试管中，按“2.2.1”项下方法操作，测定吸光度，然后每隔30 min测定1次（n=6），150 min内吸光度基本不变，表明供试品在150 min内基本稳定。
2.2.4 含量测定
精密量取供试品溶液1、2、3、4各100 μL，置25 mL试管中，按“2.2.1”项下方法操作，测定吸光度，计算总多糖含量及转移率（见表1）。
2.3 总酚酸含量测定
2.3.1 供试品溶液制备［4］
精密量取样品溶液Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ各100 mL，调整药液浓度为0.3 g生药/ mL，离心，取上清液50 mL置已处理好的XDA?5型大孔吸附树脂柱（内径1.5 cm，长度10 cm，10 mL树脂湿法装柱）中，用2倍柱体积的水冲洗至流出液近无色，弃去水液，再用70%乙醇洗脱，收集乙醇洗脱液，水浴蒸至近干，加水定容至20 mL，分别作为供试品溶液5、6、7、8。
2.3.2 测定波长选择
分别精密吸取原儿茶醛对照品及供试品溶液0.8 mL于 20 mL量瓶中，加入0.5%亚硝酸钠溶液5.0 mL，混匀，放置 12 min，再加入10%硝酸铝溶液0.5 mL，混匀，放置12 min后，加入1 mol/mL氢氧化钠溶液5.0 mL，加水稀释至刻度，摇匀，10 min后，用紫外可见分光光度计于 300～900 nm波长范围扫描，随行试剂为空白。结果对照品和供试品在490 nm波长处有一较大吸收峰，与文献报道的一致［5］。
2.3.3 原儿茶醛标准曲线的绘制
精密称取原儿茶醛对照品14.22 mg于25 mL量瓶中，加水溶解，定容至刻度，摇匀，即得。分别吸取原儿茶醛对照品溶液0.5、1、1.2、1.5、2 mL于 20 mL量瓶中，分别加入0.5%亚硝酸钠溶液5 mL，摇匀，放置 12 min后，加入 10%硝酸铝溶液0.5 mL，摇匀，放置 12 mim后，加入1 mol/L氢氧化钠溶液5.0 mL，加水稀释至刻度，摇匀， 10 mim 后，用紫外可见分光光度计于 490 nm波长处测定吸光度，以原儿茶醛毫克数对吸光度绘制标准曲线，得回归方程为：y＝0.9314x－0.0666，r＝0.9988。原儿茶醛在0.2844～1.1376 mg范围内与吸光度呈良好线性关系。
2.3.4 稳定性试验
精密量取供试品溶液5于20 mL量瓶中，按“2.3.3”项下方法操作，每间隔10 min测定1次，测定结果表明，显色后60 min内供试品基本稳定。
2.3.5 含量测定
精密量取供试品溶液5、6、7、8各100 μL，置25 mL刻度试管中，按“2.3.3”项下方法操作，测定吸光度，计算总酚酸含量及转移率（见表1）。