检验标本的采集与运送规范（护理）
一、 血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类
1、 促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、
血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。
2、 枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为
1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、 肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定
的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。
4、 EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐，
适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序
多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。
多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。
（三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本
一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽 ）采血。 采血注意事项：
1) 应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。
2) 采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
采血后应尽快送检（为保证结果准确需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。 2、凝血检测（ PT、APTT 、 TT 、 FBG ）标本
静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂：全血 = 0.2：1.8 ）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝绿色帽） 。采血注意事项：
1) 空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）； 2) 采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT
明显缩短）；
3) 应单独1管血,必须准确采血至刻度线2ml； 4) 血后应立即上下颠倒混匀5～10次，不可有凝块； 5) 采血后应尽快送检（必须2h内检测）。 3、血型与血交叉标本
用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O)1.5-2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血（EDTA抗凝管有2ml和5ml两种规格）。 采血注意事项：
1) 按抗凝管刻度准确采静脉血,采血量分别为2ml（血型）和5ml（交叉配血）； 2) 采血后立即上下颠倒混匀（5～10次），不可有凝块，且不可用强力振荡，
以免造成溶血。 最好血型与血交叉各采1管血，便于标本保存。 4、红细胞沉降率（血沉， ESR）检验标本
静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血,黑色帽 ）。 注意事项：
1) 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至1.6ml（抗凝剂：全血 = 0.32 ：
1.28）；
2) 采血后立即上下颠倒混合5～10次,不可用强力振荡 ； 3) 采血后应尽快送检（为保证结果准确,必须2h内检测）。 5、临床生化/免疫检验标本
临床生化/免疫检验多用非抗凝血标本，应使用真空负压采血管。临床生化
检验血标本采集主要注意事项是：
1) 多项临床生化/免疫检验一般各采1管血，生化检验1管，免疫检验1管； 2) 采血量视检查项目多少不同而异，单管通常为4.0～5.0ml； （四）真空采血操作顺序 1、 使用扎脉带，嘱病人握紧拳头; 2、 皮肤消毒后将采血针刺入静脉;
3、 见回血后，用穿刺针穿真空管胶塞，血液自动流入试管; 4、 血液一流入管中，便解开扎脉带;
5、 采血完毕后，先拔出采血针，待滴血停止后再拔出试管端穿刺针;
6、 如需多管血样，待第一管采集完，将试管端穿刺针拔出刺入另一真空管即可。 7、 如管内有抗凝剂，需立即颠倒混匀5～10次，防止血液凝固，其余各管依次
按本要求操作。 （五）真空采血注意事项
1、 胶塞穿刺针上的乳胶套能防止滴血，采血时不能取下; 2、 穿刺针需从真空管胶塞中心垂直穿刺; 3、 多管采血时，枸橼酸钠管需第一管采血;
4、 采血针软管的容积为0.4ml，采血时可酌情提前拔出采血针; 5、 抗凝管采血后需及时上下颠倒5～10次，颠倒动作应轻缓;
6、 采血针刺入静脉后，如穿破静脉，回血撤回，此时不必惊慌，可将采血针顺
原路缓慢退回，见回血即可。 （六）抽血时应注意的事项
1、 要注意选择部位：选择易见易触的大血管采血； 2、 病人的姿势要合适；
3、 采血前应向患者耐心解释，以消除不必要的疑虑和恐惧；
4、 为了避免淤血和浓缩，压脉带压迫时间不可过长，最好不超过１分钟； 5、 抽完血液后，必须先松开止血带，松开拳，再拔出针头，以免血液流到皮肤
上；
6、 部分肥胖或全身浮肿患者，浅在静脉难于发现或触摸不到时，可根据解剖部
位进行穿刺；
7、 老年人因皮下脂肪少，皮肤松驰，血管易于滑动，针头不易刺入，可采用先
刺入皮下，再刺入血管的方法。 （七） 抽血时常遇到的障碍 1、 注射器或采血针漏气；
2、 针头太细，抽血不畅，时间长，致血液容易凝固在针头中； 3、 针头位置未固定，抽血中途脱出血管；
4、 针头刺入皮下太深，刺入血管下面的组织，常因左手拉皮不够紧，血管未
固定之故；
5、 针头斜面一半刺入血管腔，一半在皮下，虽可抽出血但不顺畅，有时可形
成血肿；
6、 血管清析，穿刺亦正常，但就是抽不出血，常见于局部抽血或注射次数太
多，血管壁增厚腔变小所致； 7、 标本溶血（原因很多）。 （八） 血液标本常见溶血原因 1、 注射器、针头或容器不干燥； 2、 压脉带捆扎时间太久，淤血过久； 3、 穿刺不畅，损伤组织过多； 4、 抽血速度太慢或太快； 5、 血液注入容器时未取下针头； 6、 抗凝血混合时，振荡力量过大； 7、 血液未完全凝固前进行振荡； 8、 血液存放时间过长；
9、 静脉采血时，为增加血流而挤压采血部位； 10、
血液标本在送检验或运输过程中，挤压或振动过大等。
（九） 常用血液标本的采集量及送检时间
项 目 采血量 送检时间 完成检验时间 血常规分析等 ２ml 及时送检 2小时内 凝血试验 ２ml 及时送检 4小时内 血液流变学 ５ml 及时送检 4小时内
血沉 1.6ml 立即送检 2小时内 临床化学标本１
（含肝肾功、血脂 4-5ml 及时送检 4小时内 肿瘤因子等） 临床化学标本２
（含血钾、血糖、 4-5ml 立即送检 2小时内 心肌酶等）
免疫学标本 4-5ml 及时送检 4小时内 （十） 特殊血液标本的采集与送检 1、血气标本的采集与送检
血气标本可采动脉血、静脉血、混合静脉血及动脉化毛细血管血，但因后三者不能真实地反映患者的血气水平，故一般推荐动脉采血法。 采血部位：股动脉、肱动脉、桡动脉等，一般采肱动脉或桡动脉。 应用器材：注射器（0.5ml玻璃或塑料均可）、针塞（用橡皮或木塞，使针尖密闭）、冰水（作冷却标本用，若30分钟内送检则不需要）、肝素或肝素钠（作抗凝用）、利多卡因（局部麻醉用）、其它消毒用品。 采血前的准备：
1) 用注射器吸取0.3ml抗凝剂（肝素或肝素钠），浸润注射器内壁后，除残留于
死腔部分外，尽量排出抗凝剂．
2) 必要时在采血部位作局部麻醉，但注药不能过多，否则不易触及搏动． 采血（股动脉）：
1) 腹股沟内侧能触及股动脉搏动处用皮肤常规消毒．
2) 穿剌者戴无菌手套，铺无菌洞巾，并将股动脉固定于左手中指和食指之间．右
手持注射器，其针尖斜面向上，以垂直或与股动脉45°角方向进行穿剌．以右手指固定穿剌针的方向及深度，严防针头或穿剌移动，左手拉动筒栓至所需血液量．迅速拔出针头，并用无菌纱布压迫针眼片该，以防出血． 3) 如果注射器内进入少量空气，应尽快将注射器针头垂直向上排出气泡，并将
针头剌入针塞，及时送检．
（十一）、葡萄糖耐量试验的标本的采集与运送