包涵体蛋白包被ELISA板检测抗体的流程

2020-04-14 02:43

包涵体蛋白包被ELISA板检测抗体的流程

一、包涵体包被抗原制备:

在包涵体蛋白尿素溶解后不能浓缩或者置换溶剂的情况下,可以采取直接使用包涵体尿素溶解液直接作为检测原包被ELISA板。

(1) 完成包涵体的制备和洗涤流程。

(2) 按照常规流程溶解使用8M尿素或者1%SKL(十二烷基肌氨酸钠)溶解包涵体。剧烈震动后,

室温静置30分钟至2小时或者4℃过夜,使其缓慢溶解。

注: 每100mL细菌提取的包涵体使用2mL含8M尿素的Buffer A溶解;或者每100mL细菌提取的包涵体使用2mL含1%SKL的Buffer A溶解(使用前混合,1.97 ml Buffer A加入0.03 ml 20%的SKL贮存液)。 (3) 抗原稀释:使用0.05M pH9.6碳酸盐包被缓冲液(CBS)4倍稀释包涵体溶解液,分装冻存-20℃

冰箱,减少冻融次数。注意必须由少到多逐渐加入CBS,边加边震荡,以免试剂浓度变化造成的蛋白沉淀。

DMSO溶解的用CBS稀释4倍。

加入1:2-5倍PBS/TE/SW液体后切胶磨碎,4度放置3-7天,最高转速4度离心取上清冻存。

二、包涵体包被抗原浓度的确定:

1、稀释抗原:取出包涵体抗原,4℃融化。在ELISA板每孔加入100μL CBS。将100μL抗原加入ELISA

板第一竖排孔中;吹打4-5次后,吸出100μL加到第二竖排孔中;吹打4-5次后,吸出100μL加到第三竖排孔中,一次类推,最后一排吸出的100μL液体弃去。

注:每种抗原至少稀释3行,一行阳性血清检测,一行阴性血清对照,一行使用含8M尿素的Buffer A

做对照。

2、包被:4℃过夜或37℃温育2小时。弃去孔内溶液,用PBST洗3次(洗涤方法:在ELISA孔中加满

PBST,室温静置5分钟后弃去,反复三次)。拍干!

3、封闭:5%脱脂乳300μL,37℃温育2小时或4℃过夜。弃去孔内溶液,用PBST洗3次,拍干!。封

闭不彻底会导致假阳性!

4、稀释阳性血清:在本实验中,傅强的阳性血清和李仕超的阴性血清均做1000倍稀释。

5、加样:将100μL稀释好的血清加入上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1-2小时。用PBST洗3次,

拍干!。

6、加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标二抗100μL。37℃孵育不超过1小时,PBST洗涤3

次,拍干!。

7、加底物液显色:各反应孔中加入100μL TMB(避光),37℃ 10-30min显色。

注:商品化的TMB其实是TMB和双氧水的混合物,长期光照、高温甚至生产日期超过1个月都会导致

试剂失效。

8、终止反应:于各反应孔中加入50μL 2M浓硫酸。

9、结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为

无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。也可测定OD值:在ELISA检测仪上,于450nm处,以空白对照孔调零后测各孔OD值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。

10、结果分析:观察阴性对照是否也发生反应;选择检测阳性的最高稀释倍数前3-4孔的稀释度作为最佳

包被浓度。例如,阳性血清如果前8孔为阳性,那么以后检测时抗原可以做24-5稀释后包板为宜。

三、包涵体包被ELISA板检测未知抗体:

1、稀释抗原:按照前期实验结果,用CBS稀释抗原。每孔加入100μL抗原稀释液。

2、包被:4℃过夜或37℃温育2小时。弃去孔内溶液,用PBST洗3次(洗涤方法:在ELISA孔中加满

PBST,室温静置5分钟后弃去,反复三次)。拍干!

3、封闭:加入300μL 5%脱脂乳,37℃温育2小时或4℃过夜。弃去孔内溶液,用PBST洗3次。拍干!

封闭不彻底会导致假阳性!

4、加样:将25-100μL 细胞上清或者待检血清加入上述包被孔中,置37℃孵育1-2小时或4℃过夜。用

PBST洗3次,拍干。(根据实验设计,同时做空白孔、阴性对照孔及阳性对照孔)

5、加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标二抗100μL。37℃孵育不超过1小时,PBST洗涤3

次。拍干!

6、加底物液显色:各反应孔中加入100μL TMB(避光),37℃ 10-30min显色。

注:商品化的TMB其实是TMB和双氧水的混合物,长期光照、高温甚至生产日期超过1个月都会导致

试剂失效。

7、终止反应:于各反应孔中加入50μL 2M浓硫酸。

8、结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为

无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。也可测定OD值:在ELISA检测仪上,于450nm处,以空白对照孔调零后测各孔OD值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。

计算公式:(待测样OD-空白OD)/(阴性对照OD-空白OD)。大于2.1可判读为阳性。

试剂与耗材

(1)SDS裂解液200mL

成分 SDS Tris pH 7.4 EDTA 终浓度 0.1% 10mM 1mM 用量 0.2g 0.24228g 100mM 2mL (2)包被缓冲液 (pH 9.6 0.05 M CBS碳酸盐缓冲液):

(3)洗涤缓冲液 (pH 7.4,0.15 M PBS):

(4)封闭液:

(5)终止液(2 M H2SO4):


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