Western Blot实验步骤

2021-09-24 15:17

Western Blot实验步骤

Western Blot

操作步骤:

(一) 蛋白样品制备

选TRIZOL 法

(二) 蛋白含量的测定

(1) 制作标准曲线

1、 从-20℃取出1mg/ml BSA,室温融化后,备用。

2、 取18个1.5ml离心管,3个一组,分别标记为0 g,2.5 g,5.0 g ,10.0 g ,

20.0 g ,40.0 g。

4、 混匀后,室温放置2min。在生物分光光度计(Bio-Photometer,Eppentoff)

上比色分析。

5、

(2) 检测样品蛋白含量

1、 取足量的1.5ml离心管,每管加入4℃储存的考马斯亮蓝溶液1ml。室温放置

30min后即可用于测蛋白。

2、 取一管考马斯亮蓝加0.15mol/L NaCl溶液100 l,混匀放置2分钟可做为空白

样品,将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的程序下按blank测空白样品。

3、 弃空白样品,用无水乙醇清洗比色杯2次(每次0.5ml),再用无菌水洗一次。

4、 取一管考马斯亮蓝加95 l 0.15mol/L NaCl NaCl溶液和5 l待测蛋白样品,混

匀后静置2min,倒入扣干的比色杯中按sample检测样品。

注意:每测一个样品都要将比色杯用无水乙醇洗2次,无菌水洗一次。可同时混合好多个样品再一起测,这样对测定大量的蛋白样品可节省很多时间。测得的结果是5 l样品含的蛋白量。

(三) SDS-PAGE电泳

(1) 清洗玻璃板:

一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。两面都擦洗过后用自来水冲,再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。

(2) 灌胶与上样

1、 玻璃板对齐后放入夹中卡紧。然后垂直卡在架子上准备灌胶。(操作时要

使两玻璃对齐,以免漏胶。)

2、 按前面方法配10%分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时,

可用10ml枪吸取5ml胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。

然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些,胶面

Western Blot实验步骤

快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才

不会有气泡。加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。)

3、 当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。再等3min使胶充分凝固

就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。

4、 按前面方法配4%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空

间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以

免胶中有气泡产生。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收

缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经

常在两边补胶。待到浓缩胶凝固后,两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻

轻将其拔出。

5、 用水冲洗一下浓缩胶,将其放入电泳槽中。(小玻璃板面向内,大玻璃板

面向外。若只跑一块胶,那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向

外。)

6、 测完蛋白含量后,计算含50 g蛋白的溶液体积即为上样量。取出上样样

品至0.5ml离心管中,加入5×SDS 上样缓冲液至终浓度为1×。(上样总

体积一般不超过15 l,加样孔的最大限度可加20 l样品。)上样前要将样

品于沸水中煮5min使蛋白变性。( 100℃或沸水浴加热3-5分钟,以充分

变性蛋白。 冷却到室温后,把蛋白样品直接上样到SDS-PAGE胶加样孔内

即可)(为了便于观察电泳效果和转膜效果,以及判断蛋白分子量大小,

最好使用预染蛋白质分子量标准)

7、 加足够的电泳液后开始准备上样。(电泳液至少要漫过内测的小玻璃板。)

用微量进样器贴壁吸取样品,将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插

至加样孔中缓慢加入样品。(加样太快可使样品冲出加样孔,若有气泡也

可能使样品溢出。加入下一个样品时,进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤

3次,以免交叉污染。

(3) 电泳

(电泳时间一般4~5 h,电压为40V较好,也可用60V。电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳,进行转膜。)

电泳时通常推荐在上层胶时使用低电压恒压电泳,而在溴酚蓝进入下层胶时使用高电压恒压电泳。对于Bio-Rad的标准电泳装置或类似电泳装置,低电压可以设置在80-100V,高电压可以设置在120V左右。为了电泳方便起见,也可以采用整个SDS-PAGE过程恒压的方式,通常把电压设置在100V,然后设定定时时间为90-120分钟。设置定时可以避免经常发生的电泳过头。通常电泳时溴酚蓝到达胶的底端处附近即可停止电泳,或者可以根据预染蛋白质分子量标准的电泳情况,预计目的蛋白已经被适当分离后即可停止电泳。

(四) 转膜

(1) 转一张膜需准备6张7.0~8.3cm的滤纸和1张7.3~8.6cm的硝酸纤维素膜。切

滤纸和膜时一定要戴手套,因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜

置于水上浸2 h才可使用。(用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里,

要使膜浮于水上,只有下层才与水接触。这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。

若膜沉入水里,膜与水之间形成一层空气膜,这样会阻止膜吸水。)(硝酸纤维

素膜比较脆,在操作过程中特别是用镊子夹取等过程中容易裂开,推

荐在Western实验中选用PVDF膜)

(2) 在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和

浸过的膜。

Western Blot实验步骤

(3) 将夹子打开使黑的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫,用玻棒来回擀几遍以

擀走里面的气泡。(一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动。)在垫子上垫

三层滤纸(可三张纸先叠在一起在垫于垫子上),一手固定滤纸一手用玻棒擀去

其中的气泡。

(4) 要先将玻璃板撬掉才可剥胶,撬的时候动作要轻,要在两个边上轻轻的反复撬。

撬一会儿玻璃板便开始松动,直到撬去玻板。(撬时一定要小心,玻板很易裂。)

除去小玻璃板后,将浓缩胶轻轻刮去(浓缩胶影响操作),要避免把分离胶刮破。

小心剥下分离胶盖于滤纸上,用手调整使其与滤纸对齐,轻轻用玻棒擀去气泡。

将膜盖于胶上,要盖满整个胶(膜盖下后不可再移动)并除气泡。在膜上盖3

张滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫,擀几下就可合起夹子。整个操作

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