2015-2016生物药物分离纯化技术实验指导 - 图文(5)

2020-04-17 07:11

实验十四 硫酸铵分级盐析分离血清中的主要蛋白质(选做)

一、实验目的

(3)了解盐析法分离血清中主要蛋白质的基本原理; (4)掌握硫酸铵分级盐析的基本操作技术。 二、实验原理

盐析是最常见的分离蛋白质的方法,各种蛋白质所带的电荷不同、相对分子量不同,从而在高浓度的盐溶液中溶解度就不同,因此含有几种蛋白质的混合液,就可用不同浓度的中性盐来使其中各种蛋白质先后分别沉淀下来,达到分离纯化的目的,这种方法称为分级盐析。一般粗提物常用它进行粗分离。

常用的盐析剂有硫酸铵、硫酸钠、硫酸镁、氯化钠、磷酸二氢钠等,其中最常用的是硫酸铵。用盐析法分离蛋白质简单安全,而且所得的蛋白质并不丧失活性,是分离纯化中最佳的一种方法。在实际操作中,可先将蛋白质调到等电点,使其溶解度达到最低,然后加入粉末固体硫酸铵或饱和硫酸铵溶液,并达到一定浓度,这时蛋白质即从溶液中析出,经过滤或离心,透析除去盐,即可获得产品。

硫酸铵的浓度一般以饱和度表示,在不同温度下达到一定饱和度所需浓度不同,详见附表。 五、实验仪器

离心机、大烧杯(≥500ml)、烧杯(250ml)、高精度pH试纸、大容量瓶、移液管、玻璃棒等。 四、材料和试剂 1.材料

新鲜动物血浆或血清(无溶血现象)100ml。(为使血不凝固,可按血:10%柠檬酸钠=2:1的比例配制) 3.试剂

(3)pH7.2的饱和硫酸铵溶液(用氨水调节pH); (4)0.2mol/LpH7.2的磷酸缓冲液(PBS),配制方法如下:

A液:0.2mol/L磷酸氢二钠溶液(5.37g磷酸氢二钠加去离子水精确配制100ml); B液:0.2mol/L磷酸二氢钠溶液(3.12g磷酸二氢钠加去离子水精确配制100ml); 取A液72ml,B液28ml,边混合边用高精度pH试纸检测,调配成约100ml浓度为0.2mol/LpH7.2的磷酸盐缓冲液备用。 六、实验步骤 1.清蛋白与球蛋白分离

(1)取100ml血浆或血清置于500ml烧杯中,加PBS100ml搅拌10min。 (2)在搅拌下慢慢滴加200mlpH7.2饱和硫酸铵溶液。

(3)加完饱和硫酸铵溶液后继续搅拌20-30min以充分沉淀球蛋白。

(4)离心(3500r/min)20min,弃去上清液(主要含清蛋白),沉淀中含有各种球蛋白。

2.各种球蛋白的分离

(1)用100mlPBS溶解上述沉淀中的各种球蛋白,并转移至250ml烧杯中搅拌15min。 (2)在搅拌下,慢慢滴加25ml饱和硫酸铵溶液,饱和度达20%。 (3)离心(3500r/min)20min,沉淀含少量纤维蛋白质,取上清液。

(4)上清液在搅拌下,慢慢滴加18-25ml饱和硫酸铵溶液,饱和度达30%-33%。 (5)离心(3500r/min)20min得上清液和沉淀(主要含γ-球蛋白和少量β-球蛋白)。 (6)取(5)中的沉淀溶于PBS中使体积达100ml并转移至250ml烧杯中搅拌15min。 (7)在搅拌下,慢慢滴加43-50ml饱和硫酸铵溶液,饱和度达30%-33%。

(8)离心(3500r/min)20min得上清液(含β-球蛋白)和沉淀(主要含γ-球蛋白)。 (9)取(5)中的上清液在搅拌下,慢慢滴加35-40ml饱和硫酸铵溶液,饱和度约达45%。 (10)离心(3500r/min)20min得上清液(含α-球蛋白)和沉淀(主要含β-球蛋白)。 七、结果与分析

(1)观察每一次沉淀后的清液和沉淀,记录上清液和沉淀的状态和质量。 (2)如果要对不同组分所包含的主要成分进行验证可采取哪些方法? 八、注意事项

(1)缓冲液的配制应准确

(2)滴加饱和硫酸铵溶液的速度要慢一些,搅拌的速度应适中。 (3)加完硫酸铵溶液后要静置一段时间,至少20-30min,使沉淀完全。

为证明分离的效果,可和实验“凝胶层析法测定蛋白质分子质量”配合进行。


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