1 材料与仪器
1.1 动物雄性SD大鼠，体质量180～200 g，购自上海斯莱克实验动物有限公司，动物合格证号：SCXK (沪)2007-0005。
1.2 药品与试剂玄参提取物(1 g干燥提取物相当于61.7 g生药，主要含哈巴俄苷、安格洛苷C、肉桂酸及毛蕊花苷等苯丙素苷类物质)，由上海中医药大学中药化学教研室提供;布洛芬混悬液，上海强生制药公司产品，批号080503102;维生素D3注射液，上海通用药业产品，批号060902 ;丙硫氧嘧啶片，批号801720，德国瑞姆斯制药股份公司产品;脂肪乳自配(每500 ml脂肪乳中含胆固醇25 g，胆酸钠5 g，丙硫氧嘧啶2.5 g，猪油75 g);TNF-αELISA试剂盒，批号：200812156;IL-1βELISA试剂盒，批号：200812156;IL-6ELISA试剂盒，批号：200812156;IL-10ELISA试剂盒，批号：200812156，均为上海西唐生物科技有限公司产品;兔抗鼠一抗，上海卓康公司产品，批号：860938;羊抗兔二抗，武汉博士德有限公司产品，批号：200903。
1.3 仪器BX51/BX52型系统显微镜，日本Olympus公司;Lamage-Pro plus 4.0 Media Cybernetics图象分析系统，L.P USA;DL 250RC2L离心机，上海中科生物医学高科技开发有限公司;DENLEY DRAGON Wellscan MK 3酶标仪,芬兰Thermo公司。
2 方法
2.1 动物分组及给药40只SD大鼠，雄性，随机分为正常组、模型组、布洛芬组、玄参提取物低剂量组、玄参提取物高剂量组，每组8只。按照文献方法[3]，采用一次性腹腔注射维生素D3，60万单位/kg，同时每天灌服脂肪乳10 ml/kg，连续70 d，制备动脉硬化大鼠模型。正常组一次性注射同等体积的生理盐水，并每天灌服蒸馏水。各药物组在造模的同时，每天给予相应的药物进行防治。玄参提取物低剂量组：灌服玄参提取物20.5 mg/kg;玄参提取物高剂量组：灌服玄参提取物41.0 mg/kg;布洛芬组：灌服布洛芬144.0 mg/kg;正常组和模型组：灌服等量蒸馏水。
2.2 检测指标
2.2.1 血脂、细胞因子的测定动物给药70 d后，禁食12 h，不禁水，25%乌拉坦腹腔注射麻醉大鼠，腹主动脉取血，4 000 r/min，离心15 min，分离血清，将其分为5份， -20℃保存。1份血清用于血脂的测定：全自动生化分析仪测定大鼠的胆固醇、三酰甘油、低密度脂蛋白及高密度脂蛋白水平，并计算高密度脂蛋白与低密度脂蛋白的比值;其余4份用于炎症细胞因子的测定：ELISA法分别测定TNF-α，IL-1β，IL-6，IL-10的浓度，实验严格按照试剂盒步骤操作。
2.2.2 NF-κB的测定取腹主动脉，石蜡包埋与切片，免疫组化分析采用SABC法观察动脉中膜NF-кB的阳性表达，实验严格按照试剂盒的步骤操作。NF-кB活化表现为胞浆、胞核黄染，以核黄染为阳性细胞。观察位置为动脉中膜，每张切片选取细胞分布均匀的3个高倍视野作为观察区，计数3个视野内细胞数和阳性细胞数，计算阳性细胞率，取其平均值。染色结果参见阳性细胞半定量分析法[4]。在高倍镜下对细胞核内的反应作如下评分：
染色强度：0为无染色;1为染色弱;2为中等染色强度;3为染色强。
阳性细胞率：0为<5% ;1为<25% ;2为<50% ;3为<75% ;4为≥75% 。
以染色强度与阳性细胞率之和计算评分，0～1分为阴性(-)，2～3分为弱阳性(±)，4～5分为阳性(+)，6～7分为强阳性(++)，其中“-～ ±”视为低表达，“+～++”视为过表达。
2.2.3 病理形态学观察取腹主动脉，浸泡于10%的福尔马林中，常规石蜡包埋、切片、HE染色观察动脉病变情况，并计算中膜厚度与血管内腔半径比值。血管内腔半径的计算方法：以像素为单位，用IPP图像分析仪测出血管内腔的面积S1，用S1=πR12计算出血管内腔半径R1;中膜厚度的计算方法：用图像分析仪测出中膜层加血管内腔面积S2，根据S2=πR22计算出血管内腔半径与中膜厚度之和R2，中膜的厚度R=R2-R1。