微 生 物 实 验 教 案(4)

2020-02-22 14:32

哚试剂后切勿摇动试管以免破坏乙醚层而影响结果。

4在糖发酵试验的培养管中装入倒置杜氏小管时,注意防止小管内有残留气泡。灭菌时适当延长煮沸时间可除去管内气泡。

实验九 培养基的配制

一、实验目的

1学习和掌握配制培养基的一般方法和步骤 2学会实验室灭菌锅的使用方法 二、实验材料

1牛肉膏、蛋白胨、琼脂、可溶性淀粉、葡萄糖、孟加拉红、链霉素、1mol/LNaOH、1mol/LHCl、KNO3、NaCl、K2HPO4·3H2O、MgSO4·7H2O、FeSO4.·7H2O。 2试管、三角瓶、烧杯、量筒、玻璃棒、天平、牛角匙、pH试纸、棉花、牛皮纸、记号笔、线绳、纱布。 3 灭菌锅 三、实验方法

(一)牛肉膏蛋白胨培养基的配制

牛肉膏蛋白胨培养基是一种应用最广泛和最普通的细菌基础培养基。其配方如下:

牛肉膏3g,蛋白胨10g.NaCl5g,琼脂15-20g,水1000mL,pH7.4-7.6。 1称药品:按实际用量计算后,按配方称取各种药品放入大烧杯中。牛肉膏可放在小烧杯或表面皿中称量,用热水溶解后倒入大烧杯;也可放在称量纸上称量,随后放人热水中,牛肉膏便与称量纸分离,立即取出纸片。蛋白胨极易吸潮,故称量时要迅速。

2加热溶解:在烧杯中加入少于所需要的水量,然后放在石棉网上,小火加热,并用玻棒搅拌,待药品完全溶解后再补充水分至所需量。若配制固体培养基,则将称好的琼脂放入已溶解的药品中,再加热融化,此过程中,需不断搅拌,以防琼脂糊底或溢出,最后补足所失的水分。

3调PH:检测培养基的PH,若pH偏酸,可滴加1滴1mol/LNaOH,边加边搅拌,并随时用pH试纸检测,直至达到所需pH范围。若偏碱,则用1mol/L HCl进行调节。pH的调节通常放在加琼脂前。应注意pH值不要调过头,以免回调而影响培养基内各离子的浓度。

4过滤:液体培养基可用滤纸过滤,固体培养基可用4层纱布趁热过滤,以利结果的观察。

5分装:按实验要求,可将配制的培养基分装入试管或三角瓶内。分装时可用三角漏斗以免培养基沾在管口或瓶口上面造成污染。

分装量:固体培养基约为试管高度的1/5,灭菌后制成斜面。分装入三角瓶内以不超过其容积一半为宜。半固体培养基以试管高度的1/4为宜,灭菌后垂直待凝。 6加棉塞:试管口和三角瓶口塞上用普通棉花(非脱脂棉)制作的棉塞。棉塞的形状、大小和松紧度要合适,四周紧贴管壁,不留缝隙,才能起到防止杂菌侵入和有利通汽的作用。要使棉塞总长约3/5塞人试管口或瓶口内,以防棉塞脱落。有些微生物需要更好的通气,则可用8层纱布制成通气塞。有时也可用试管帽或塑料塞代替棉塞。

7包扎:加塞后,将三角瓶的棉塞外包一层牛皮纸或双层报纸,以防灭菌时冷凝水沾湿棉塞。若培养基分装于试管中,则应先把试管扎成捆后,再于棉塞外包一层牛皮纸。然后用记号笔注明培养基名称、组别、日期。

8灭菌:将上述培养基于121.3℃湿热灭菌20min。如因特殊情况不能及时灭菌,则应放人冰箱内暂存。

9摆斜面:灭菌后,如制斜面,则需趁热将试管口端搁在一根长木条上,并调整斜度,使斜度的长度不超过试管总长度的1/2。

10无菌检查:将灭菌的培养基放入37℃温箱中培养24-48h,无菌生长即可使用。或储存于冰箱清洁的橱内,备用。 (二) 高氏1号培养基的配制

高氏1号培养基是用于分离和培养放线菌的合成培养基。其配方如下: 可溶性淀粉20g,KNO31g、NaCl 0.5g、K2HPO4.3H2O0.5g、MgSO4·7H2O0.5g、FeSO4.7H2O0.01g,琼脂l5-20g,水1000ml,pH 7.4-7.6。

1 称量和溶解:先计算后称量,按用量先称取可溶性淀粉,放入小烧杯中,并用少量冷水将其调成糊状,再加至少于所需水量的沸水中,继续加热,边加热边搅拌,至其完全溶解。再加入其他成分依次溶解。对微量成分FeSO4·7H2O可先配成高浓度的贮备液后再加入。待所有药品完全溶解后,补充水分到所需的总体积。如要配制固体培养基,其琼脂溶解过程同牛肉膏蛋白胨培养基配制。

2 PH调节、分装、包扎、灭菌及无菌检查同牛肉膏蛋白胨培养基配制。 (三)马丁氏培养基的配制

马丁氏培养基是用于分离真菌的选择培养基。其配方如下:

K2HPO4.3H2O1g、MgSO4·7H2O0.5g、蛋白胨5g,葡萄糖10g,琼脂15-20g,水1000ml,自然pH。

1称量和溶解:先计算后称量,按用量称取各成分,并将其溶解在少于所需要的水中。待各成分完全溶解后,补充水分到所需体积。再将孟加拉红配成1%的水溶液,

在1000ml培养液中加人以上孟加抗红溶液3.3ml,混匀后,加入琼脂加热融化,方法同牛肉膏蛋白胨培养基配制。

2分装、包扎、灭菌及无菌检查同牛肉膏蛋自胨培养基配制。

3链霉素的加入:链霉素受热容易分解,所以临用时,将培养基融化后待温度降至45℃左右时才能加入。可先将链霉素配成1%的溶液(配好的链霉素溶液保存扩-20℃),在100mL培养基中加1%链霉素0.3mL,使每毫升培养基中含链霉素30ug。 四、实验结果和报告

记录本实验配制培养第的名称、数量,并图解说明其配制过程,指明要点。 五、问题和思考

1配制培养基有哪几个步骤?在操作过程中应注意些什么问题?为什么?

2培养基配制完成后,为什么必须立即灭菌?若不能及时灭菌应如何处理?如何进行无菌检查,

3试设计实验对饮料进行无菌检查。 六、演示

1培养基的分装方法。 2试管斜面的搁置方法 七、注意事项

称药品用的牛角匙不要混用,称完药品应及时盖紧瓶盖。调PH时要小心操作,避免回调。不同培养基各有配制特点,要注意具体操作。

实验十 土壤的稀释、分离、纯化及无菌操作技术

一、实验目的和内容

1学习从上壤中分离微生物的方法,学习无菌操作技术。 2用稀释法分离细菌、放线茵和霉菌。 3用平板划线法分离微生物。

4学习斜面接种及穿刺接种等无菌操作技术。 二、实验材料

1金黄色葡萄球菌和普通变形菌斜面菌种。

2已灭菌的牛肉膏、高氏1号、土豆蔗糖固体培养基各1瓶。

3无菌培养皿12套、无菌EP管10支、土壤样品、天平、称量纸、药匙、试管架、记号笔、涂布器、1000ul移液器、200ul移液器、20ul移液器、1000ul枪头、200ul枪头、20ul枪头。

4无菌水(49.5mL、带玻璃珠) 1瓶、80%乳酸、10%酚液、95%乙醇。

三、实验方法 (一)土壤稀释分离

1取土壤:取表层以下5-10ml处的土样.放入灭菌的袋中备用,或放在4℃冰箱中暂存。 2制备稀释液

(1)制备土壤悬液:称土样0.5g,迅速倒人带玻璃珠的无菌水瓶中,振荡5-10min,使土壤充分打散,即成为10-2的土壤悬液。

(2)梯度稀释:用移液器吸10-2的土壤悬液100ul,放入装有900ul无菌水的EP管中,上下颠倒数次,即为10-3的稀释液,如此重复,可依次制成10-3-10-8的稀释液。 注意:每一个稀释度换用一支枪头。 3混菌法测定菌落数的方法

(1)细菌:取10-7、10-6两管稀释液各400ul,分别接入相应标号的平皿中,每个稀释度接两个平皿。然后取冷却至50℃的牛肉膏琼脂培养基,分别倒人以上培养皿中(装量以铺满皿底的2/3为宜),迅速轻轻摇动平皿,使菌液与培养基充分混匀,但不沾湿平皿的边缘,待琼脂凝固即成细菌平板。倒平板时要注意无菌操作。 (2)放线菌:取10-5、10-4两管稀释液,在每管中加入10%酚液50ul,摇匀,静置片到,然后分别从两管中吸出400ul加入相应标号的平皿中,选用高氏1号培养基,用与细菌相同的方法倒入平皿中,便可制成放线菌平板。

(3)霉菌:取10-2、10-3两管稀释液各400ul,分别接入相应标号的平皿中,每个稀释险接两个平皿。在熔好的土豆蔗糖培养基中,每1000ul加入灭菌的乳酸10ul,轻轻摇匀,然后用与细菌相同的方法倒入平皿中,便可制成霉菌的平板。

4培养:将接种好的细菌、放线菌、霉菌平板倒置,即皿盖朝下放置,于28-30℃中温培养,细菌培养1-2d,放线菌培养5-7d,霉菌培养3-5d。可用于观察菌落,用于进一步纯化分离或直接转接斜面。 (二)平板划线分离微生物

1倒平板:按无菌操作要求,在火焰旁操作,取融化并冷却至不烫手的固体培养基(约50℃),倒入无菌培养皿中,倒量以铺满皿底为限,平放桌上待其充分凝固,备用。

2划线分离:使用接种环,从待纯化的菌落或待分离的斜面菌种中沾取少量菌样,在相应培养基平板中划线分离,划线的方法多样,目的是获得单个菌落。 3培养:方法同“土壤稀释分离” (三)斜面接种和穿刺接种 1斜面接种

(1)取新鲜斜面固体培养基,分别做好标记(写上菌名、接种日期、接种人等),

然后用无菌操作方法,把持接菌种接入以上新鲜培养基斜面中。

(2)接种的方法是,用接种环沾取少量待接菌种,然后在新鲜斜面上“之”字形划线,方向是从下部开始,一直划至上部。注意划线要轻,不可把培养基划破。 (3)接种后30℃恒温培养,细菌培养48h,放线菌、霉菌培养至孢子成熟方可取出保存。 2穿刺接种

(1)取两支新鲜半固体牛肉膏蛋白胨柱状培养基,做好标记(写上菌名、接种日期、接种人等)。分别接入金黄色葡萄球菌和普通变形菌。

(2)接种的方法是,用接种针沾取少量待接菌种.然后从柱状培养基的中心穿入其底部(但不要穿透)、然后沿原刺入路线抽出接种针,注意接种针不要移动。 (3)接种后30℃恒温培养,24h后观察,比较两种菌的生长结果。 四、实验结果和报告

1记录土壤稀释分离结果,并计算出每克土壤中的细菌、放线曲和霉菌的数量。 计算方法:选择长出菌落数30-300之间的培养皿进行计数,技以下公式: 总个数/g=同一稀释度几次重复的菌落平均数x稀释倍数 2分别记录平板划线、斜面接种的结果,并自我评价。 3比较两种细雨穿刺按种的结果,并进行分析。 五、问题和思考

1在测定土壤微生物含量中,除混菌法外还可用什么方法? 2试设计实验,从土壤中分离出酵母菌,并进行计数。

3试设计实验,从水或者空气中分离微生物,并进行计数。六、注意事项 1一般土壤中,细菌最多,放线菌及霉菌次之,而酵母菌主要见于果园及菜园土壤中,故从土壤中分离细菌时,要取较高的稀释度,否则菌落连成一片不能计数。

2在土壤稀释分离操作中,每稀释10倍,最好更换一次移液管,使计数准确。 3放线菌的培养时间较长,故制平板的培养基用量可适当增多。

实验十一 厌氧微生物的培养

一、实验目的

1 学习培养厌氧微生物的方法,了解厌氧微生物生长的特性。 2 掌握深层穿刺法厌氧培养丙酮丁醇梭菌的操作。 3掌握厌氧法培养丙酮丁醇梭菌及产气荚膜梭菌。 二、实验材料

1丙酮丁醇梭菌、产气荚膜梭菌。


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