一、检测流程
①富集白细胞样本。样本处理方法可参照一、（一）至（五）中的内容。
②将待测样本、质控加入到试剂中，上机，编辑样本名称并选择基因型。某一批次的试剂第一次检测时，须加质控用于设定参数，之后的检测不需要再加质控。选择基因型时，样本选择相应的基因型，质控选择“通用”
③设备运行检测。
④根据质控的St值关系，计算出ΔSt，依据“三、1”的内容，进行MaxSt差值上限与MinSt差值下限（在博奥客户端中，此二项为ΔSt上限、ΔSt下限）的设定。必要时，修正St值上限与St值下限等参数。
⑤重新加载实验数据文件，进行结果的判定。
（一） 可检测样本
1、血液样本：2-3ml静脉全血(不需空腹)，使用一次性真空抽血管（EDTA抗凝紫帽管）采集，于4℃或-20℃低温保存，保存时间不宜超过24h。
2、组织样本：样本量大于0.3g（约黄豆大小），普通肌肉或肠胃黏膜等组织样本均可。使用石蜡或其他染色液处理的样本需要清除包埋剂或染色液。
3、纯化的基因组。
（二） 试剂与器材准备
1.商品名：耀金保；用于在进行SNP分析前对血液、组织标本的保存。
2.商品名：耀金分/耀金染；用于荧光染色原位杂交及染色体核型分析、化学药物用药指导时的样本分析。 3. 10×NH4Cl预处理液。处理血液样本时用于裂解红细胞。
4. 1×NH4Cl。使用注射用灭菌水，按照注射用灭菌水：预处理液=1:9的比例，将预处理液10×NH4Cl稀释为1×NH4Cl，备用。
5. 1000ul、200ul、2.5ul移液枪及枪尖，1.5ml离心管（灭菌）。
6.液氮。用于组织样本处理。
7.陶瓷研钵、研棒。用于组织样本的处理。 8.注射用灭菌水。
（三） 样本处理方法—从血液样本中富集白细胞
1.对用EDTA抗凝管采集到的临床全血样本进行编号（年、月、日、患者编号），上下颠倒混匀；取若干1.5ml离心管，并在管盖上编写序号，与抗凝管上编号一致。
2.在1.5ml离心管中加入1.2mL 1×NH4Cl预处理液。
3.取150ul混匀的临床全血，加入对应编号的1×NH4Cl预处理液离心管中。
4.上下颠倒10次，室温静置5min，此时1×NH4Cl裂解红细胞。血样与1×NH4Cl混匀后，液体颜色会逐渐变为澄清的红色。
5.室温3000rpm (或500-700g)离心5min，将上层透明红色液体吸取干净，注意避免吸走沉淀在管底的白细胞。
注：离心后管底部可见约2×2mm的白细胞沉淀，如白细胞团过小，须重复2-5步骤。
6.加入1mL1×NH4Cl（或生理盐水）彻底重悬白细胞，室温3000rpm (或500-700g)离心5min，将上层液体吸干净，注意避免吸走管底白细胞。
7.向富集有白细胞的离心管中加入50ul耀金保，反复吹打混匀。 8.室温静置20-30min，期间颠倒混匀2次，待检测。
（四）样本处理方法—组织样本处理
1.在洁净的陶瓷研钵中加入待处理组织样本，加入足量液氮。 2.使用陶瓷研棒将组织样本研磨破碎，尽量破碎组织样本的细胞结构。
3.向研钵中加入100ul耀金保，使用研棒搅动以溶解破碎的样本。 4.将溶有样本的耀金保吸取到1.5ml离心管中，待检测。
（五）样本处理方法—纯化的基因组
纯化的基因组不需要进行预处理，也不需要使用耀金保保存。可以直接加入到试剂中进行检测。 （六） 上样
1、根据需要检测的基因位点，取出相应耀金分/耀金染试剂，并将样本编号标注在试剂管盖上；如果试剂粘附在管壁或者上盖，需要离心，保证检测体系完整。
2、向相应编号的耀金分试剂中加入1.5ul处理后的白细胞样本（加样时应再次混匀，枪头在管内液体中间吸足样本，加入量过少会直接影响结果）；